RNA温度计
RNA温度计(RNA thermometer),亦称RNA温度传感器(RNA thermosensor)是一类对温度敏感的非编码RNA,能随温度变化调控基因表达。RNA温度计主要调控与热休克和冷休克反应有关的基因,但与致病性、饥饿状态等过程相关的基因调控也有关系[1]。
RNA温度计一般通过二级结构的改变对温度变化做出反应。结构的改变会使RNA上核糖体结合位点等重要区域暴露或遮蔽,进而改变对应编码基因的转译速率。
RNA温度计与核糖开关一样,都是支持RNA世界假说的有力证据。RNA世界假说认为RNA为早期生命的唯一组成成分,但随生物进化,RNA携带遗传信息的功能由DNA取代,RNA的生物催化活性由蛋白质取代,形成了今日的DNA-RNA-蛋白质系统[2][3]。
RNA温度计的实例有FourU温度计[4]、Hsp90顺式作用元件[5]、ROSE元件[6]以及Hsp17温度计[7]。
发现
[编辑]温度敏感的RNA元件于1989年首次发现[8]。不过,早在1986年,研究人员就发现λ噬菌体cIIImRNA转录开始位点上游的突变会影响cIII蛋白质的转译速率[9]。cIII蛋白质与λ噬菌体对溶原性循环和裂解循环的选择有关,高浓度的cIII蛋白能促进溶原化[9]。进一步的研究表明cIII mRNA上游区域一定存在两种二级结构之一。实验表明,这两种结构可以完全互换,其活性都依赖镁离子浓度和温度[8][10]。现在已知该结构就是RNA温度计。该结构的作用即促进噬菌体在高温压力下转入裂解循环,以保证噬菌体能快速复制,脱离原宿主细胞[1]。
RNA温度计这一名词是在1999年提出的[11],最初, 该名词用于描述大肠杆菌中发现的RNA元件rpoH[12]。2007年,研究人员通过生物信息学手段发现了一些可能为新的RNA温度计的序列[13]。使用传统的序列-碱基搜寻方法找寻RNA温度计效率很低,因为RNA温度计的二级结构比一级结构(核酸序列)保守得多[13]。
分布
[编辑]目前的观点认为,大部分RNA温度计都位于编码热休克蛋白(HSP)的mRNA的5'端非转译区(UTR)。但有研究人员提出,在基因组数据中找寻非保守的短RNA序列本身就很难,加上采样可能出偏差,因而得出了上述(不准确的)结论[14][15]。
尽管绝大部分RNA温度计都是在原核生物中发现的,但科学家亦于包括人在内的哺乳动物体内发现了可能为RNA温度计的非编码RNA[16],即热休克RNA-1(HSR1)。在人体内,这种RNA分子在温度超过37摄氏度(即人的正常体温)时能活化热休克转录因子-1(HSF1)基因的表现,进而激活保护性蛋白的表现,达到防止细胞过热的目的[16]。
结构
[编辑]RNA温度计结构上很简单,短RNA序列就能构成。目前已知最短的RNA温度计发现于某种集胞藻体内(Synechocystis sp. PCC6803),只有44个核苷酸残基(44nt)长,为编码热休克蛋白hsp17的mRNA[18][19]。大部分RNA温度计的长度都介于60-110nt之间[20]。RNA温度计通常都含有发卡结构(茎环结构)。RNA温度计的发卡结构因为有少量的错配碱基对,稳定性较差,因此在温度升高后很容易去折叠[21]。
对RNA温度计ROSE元件的具体结构分析表明,G-G、U-U、UC-U等错配的碱基对之间以非标准的碱基配对连结,有利于RNA双螺旋结构的维持(如左图所示)。另外,这些非常规的碱基配对稳定性较差,温度升高后,很容易就解开,使SD序列暴露[17]。
一些RNA温度计的结构远比一个单一的发卡结构复杂,比如,研究人员推测CspA mRNA5'端非转译区含有一个假结与多个发卡结构[22][23]。
人工合成的RNA温度计通常都设计成只含有一个简单茎环结构[24]。然而,这样的短RNA温度计的二级结构对突变很敏感,即使是一个碱基对的变化(点突变)也可能造成其茎环结构在体内(in vivo)失活[25]。
机理
[编辑]RNA温度计一般位于mRNA5'端非转译区,即编码基因的上游[1]。位于此处使得RNA温度计能遮蔽核糖体结合位点(RBS),阻止mRNA转译为蛋白质[14]。随温度增加,茎环结构会解旋,使核糖体结合位点或SD序列暴露,使得mRNA能与核糖体30S亚基(小亚基)结合。紧接着,转译机器会完成组装[1]。起始密码子一般位于SD序列下游8个核苷酸残基处[14]。从起始密码子开始,转译正式开始,核糖体随后能转译出一整条多肽链,到终止密码子为止[26]。除了这种顺式作用机理外,在饥饿反应相关的RposS mRNA 5'非转译区中还发现了一个使用反式作用机理的特例。[1]。
RNA温度计的一个特例是肠道沙门氏菌(Salmonella enterica)体内发现的FourU[4]。当处于大约45摄氏度的环境中时,SD序列所在区域的“茎”结构碱基配对会解开,使mRNA能与核糖体结合,启动转译[25]。已证明FourU的稳定性与Mg2+的浓度有关[27]。目前,研究得最透彻的RNA温度计位于大肠杆菌(E. coli)的rpoH基因中[28]。该RNA温度计能在高温环境下通过一种特殊的热休克σ因子σ32上调热休克蛋白的表现水平[11]。
一般来说,RNA温度计都与热诱导蛋白质的表现有关,不过,RNA温度计也能调控冷休克蛋白质的表现[22]。比如,嗜热栖热菌(Thermus thermophilus)中两种7kDa的蛋白质的表现就受RNA温度计的调控[29],另外,在肠杆菌目中也发现了类似的调控机制[23]。
病原体可利用对37摄氏度的温度敏感的RNA温度计激活感染相关基因的表现[14]。比如,在李斯特菌细胞内,一种调控与毒性相关的基因转录的关键蛋白由prfA基因编码。研究人员设计了以下实验证明RNA温度计对prfA表现的上调:将PrfA温度调控非转译区与绿色萤光蛋白基因融合,再将其置于大肠杆菌的T7启动子调控之下。于37摄氏度下,可以观察到绿色萤光蛋白的表现,而在30摄氏度下无法观察到[30]。
对RNA世界学说的影响
[编辑]RNA世界学说认为在早期生命中,RNA既是遗传信息的载体,又具有生物催化活性。另外,还有RNA扮演基因表现调控和感受器的角色[31]。该学说认为,现在的DNA-RNA-蛋白质系统是由上述原始的RNA生物进化而来,因为DNA-RNA-蛋白质系统相对原始的RNA生物具有优势,使用DNA-RNA-蛋白质系统的生物在自然选择中胜过了RNA生命,成为现代生命的形式。DNA-RNA-蛋白质系统中,RNA携带遗传信息的功能由DNA取代,其生物活性则由蛋白质取代。但仍然保留有部分具有催化活性的RNA,即核酶[2]。
RNA温度计以及核糖开关因为其广泛分布于各物种之中,都被认为是RNA生命向现代的DNA-RNA-蛋白质系统过渡时产生的进化遗迹[32]。一般认为,在早期的RNA世界中,RNA温度计的作用是对其他的RNA分子进行温度依赖性的调控[2][33]。在现代生物中,RNA温度计可以说是一个RNA世界的良好分子化石[2]。
其他实例
[编辑]- Hsp90顺式作用元件能在果蝇体内调控Hsp90的表现水平,在高温下提高热休克蛋白的转译速率[5]。
- 预测大肠杆菌的ibpAB操纵子中含有两个协调作用的RNA温度计:ROSE元件和IbpB温度计[34]。
- ROSE1和ROSEAT2分别发现于大豆慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicum)以及根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)中。它们都位于HpsAmRNA的5'UTR内,能在正常生理温度条件下抑制热休克蛋白的表现[6][35]。
参考文献
[编辑]- ^ 1.0 1.1 1.2 1.3 1.4 1.5 Narberhaus F, Waldminghaus T, Chowdhury S. RNA thermometers. FEMS Microbiol. Rev. January 2006, 30 (1): 3–16 [2011-04-23]. PMID 16438677. doi:10.1111/j.1574-6976.2005.004.x.
- ^ 2.0 2.1 2.2 2.3 Atkins, John F.; Gesteland, Raymond F.; Cech, Thomas. The RNA world: the nature of modern RNA suggests a prebiotic RNA world. Plainview, N.Y: Cold Spring Harbor Laboratory Press. 2006. ISBN 0-87969-739-3.
- ^ 胡火珍、税青林等. 醫學細胞生物學(第7版). 北京: 科学出版社. 2015: 8–9. ISBN 978-7-03-042238-5.
- ^ 4.0 4.1 Waldminghaus T, Heidrich N, Brantl S, Narberhaus F. FourU: a novel type of RNA thermometer in Salmonella. Mol. Microbiol. July 2007, 65 (2): 413–24 [2010-07-16]. PMID 17630972. doi:10.1111/j.1365-2958.2007.05794.x.[永久失效链接]
- ^ 5.0 5.1 Ahmed, R; Duncan RF. Translational regulation of Hsp90 mRNA. AUG-proximal 5'-untranslated region elements essential for preferential heat shock translation. J Biol Chem. 2004, 279 (48): 49919–49930. PMID 15347681. doi:10.1074/jbc.M404681200.
- ^ 6.0 6.1 Nocker, A; Hausherr T; Balsiger S; Krstulovic NP; Hennecke H; Narberhaus F. A mRNA-based thermosensor controls expression of rhizobial heat shock genes. Nucleic Acids Res. 2001, 29 (23): 4800–4807. PMC 96696 . PMID 11726689. doi:10.1093/nar/29.23.4800.
- ^ Kortmann J, Sczodrok S, Rinnenthal J, Schwalbe H, Narberhaus F. Translation on demand by a simple RNA-based thermosensor.. Nucleic Acids Res. 2011, 39 (7): 2855–68. PMC 3074152 . PMID 21131278. doi:10.1093/nar/gkq1252.
- ^ 8.0 8.1 Altuvia, S; Kornitzer, D; Teff, D; Oppenheim, AB. Alternative mRNA structures of the cIII gene of bacteriophage lambda determine the rate of its translation initiation. Journal of Molecular Biology. 1989-11-20, 210 (2): 265–80. PMID 2532257. doi:10.1016/0022-2836(89)90329-X.
- ^ 9.0 9.1 Altuvia, S; Oppenheim, AB. Translational regulatory signals within the coding region of the bacteriophage lambda cIII gene. Journal of Bacteriology. Jul 1986, 167 (1): 415–9. PMC 212897 . PMID 2941413.
- ^ Altuvia, S; Kornitzer, D; Kobi, S; Oppenheim, AB. Functional and structural elements of the mRNA of the cIII gene of bacteriophage lambda. Journal of Molecular Biology. 1991-04-20, 218 (4): 723–33. PMID 1827163. doi:10.1016/0022-2836(91)90261-4.
- ^ 11.0 11.1 Storz, G. An RNA thermometer. Genes & Development. 1999-03-15, 13 (6): 633–6. PMID 10090718. doi:10.1101/gad.13.6.633.
- ^ Morita, MT; Tanaka, Y; Kodama, TS; Kyogoku, Y; Yanagi, H; Yura, T. Translational induction of heat shock transcription factor sigma32: evidence for a built-in RNA thermosensor. Genes & Development. 1999-03-15, 13 (6): 655–65. PMC 316556 . PMID 10090722. doi:10.1101/gad.13.6.655.
- ^ 13.0 13.1 Waldminghaus, T; Gaubig, LC; Narberhaus, F. Genome-wide bioinformatic prediction and experimental evaluation of potential RNA thermometers. Molecular genetics and genomics : MGG. Nov 2007, 278 (5): 555–64. PMID 17647020. doi:10.1007/s00438-007-0272-7.
- ^ 14.0 14.1 14.2 14.3 Narberhaus F. Translational control of bacterial heat shock and virulence genes by temperature-sensing mRNAs. RNA Biol. 2010, 7 (1): 84–9 [2011-04-23]. PMID 20009504. doi:10.4161/rna.7.1.10501.
- ^ Johansson J. RNA thermosensors in bacterial pathogens. Contrib Microbiol. Contributions to Microbiology. 2009, 16: 150–60. ISBN 978-3-8055-9132-4. PMID 19494584. doi:10.1159/000219378.
- ^ 16.0 16.1 Shamovsky I, Ivannikov M, Kandel ES, Gershon D, Nudler E. RNA-mediated response to heat shock in mammalian cells. Nature. March 2006, 440 (7083): 556–60. Bibcode:2006Natur.440..556S. PMID 16554823. doi:10.1038/nature04518.
- ^ 17.0 17.1 Chowdhury, S; Maris, C; Allain, FH; Narberhaus, F. Molecular basis for temperature sensing by an RNA thermometer. The EMBO Journal. 2006-06-07, 25 (11): 2487–97. PMC 1478195 . PMID 16710302. doi:10.1038/sj.emboj.7601128.
- ^ Kortmann, J; Sczodrok, S; Rinnenthal, J; Schwalbe, H; Narberhaus, F. Translation on demand by a simple RNA-based thermosensor.. Nucleic Acids Research. Apr 2011, 39 (7): 2855–68. PMC 3074152 . PMID 21131278. doi:10.1093/nar/gkq1252.
- ^ Kortmann J, Sczodrok S, Rinnenthal J, Schwalbe H, Narberhaus F. Translation on demand by a simple RNA-based thermosensor. Nucleic Acids Res. April 2011, 39 (7): 2855–68 [2011-04-23]. PMC 3074152 . PMID 21131278. doi:10.1093/nar/gkq1252.
- ^ Waldminghaus T, Fippinger A, Alfsmann J, Narberhaus F. RNA thermometers are common in alpha- and gamma-proteobacteria. Biol. Chem. December 2005, 386 (12): 1279–86. PMID 16336122. doi:10.1515/BC.2005.145.
- ^ Narberhaus, F. Translational control of bacterial heat shock and virulence genes by temperature-sensing mRNAs.. RNA biology. Jan–Feb 2010, 7 (1): 84–9. PMID 20009504. doi:10.4161/rna.7.1.10501.
- ^ 22.0 22.1 Breaker RR. RNA switches out in the cold. Mol. Cell. January 2010, 37 (1): 1–2 [2010-07-23]. PMID 20129048. doi:10.1016/j.molcel.2009.12.032. (原始内容存档于2017-11-02).
- ^ 23.0 23.1 Giuliodori AM, Di Pietro F, Marzi S, et al. The cspA mRNA is a thermosensor that modulates translation of the cold-shock protein CspA. Mol. Cell. January 2010, 37 (1): 21–33. PMID 20129052. doi:10.1016/j.molcel.2009.11.033.
- ^ Neupert, J; Karcher, D; Bock, R. Design of simple synthetic RNA thermometers for temperature-controlled gene expression in Escherichia coli. Nucleic Acids Research. Nov 2008, 36 (19): e124. PMC 2577334 . PMID 18753148. doi:10.1093/nar/gkn545.
- ^ 25.0 25.1 Nikolova EN, Al-Hashimi HM. Thermodynamics of RNA melting, one base pair at a time. RNA. September 2010, 16 (9): 1687–91. PMC 2924531 . PMID 20660079. doi:10.1261/rna.2235010.
- ^ Jocelyn E. Krebs; et al. Genes XI. JONES&BARTLETT LEARNING(高等教育出版社版). 2014: 37. ISBN 978-7-04-039649-2.
- ^ Rinnenthal, J; Klinkert, B; Narberhaus, F; Schwalbe, H. Modulation of the stability of the Salmonella fourU-type RNA thermometer. Nucleic Acids Research. 2011-07-04, 39 (18): 8258–70. PMC 3185406 . PMID 21727085. doi:10.1093/nar/gkr314.
- ^ Shah P, Gilchrist MA. Spirin, Alexander S. , 编. Is thermosensing property of RNA thermometers unique?. PLoS ONE. 2010, 5 (7): e11308. PMC 2896394 . PMID 20625392. doi:10.1371/journal.pone.0011308.
- ^ Mega R, Manzoku M, Shinkai A, Nakagawa N, Kuramitsu S, Masui R. Very rapid induction of a cold shock protein by temperature downshift in Thermus thermophilus. Biochem. Biophys. Res. Commun. August 2010, 399 (3): 336–40. PMID 20655297. doi:10.1016/j.bbrc.2010.07.065.
- ^ Johansson J, Mandin P, Renzoni A, Chiaruttini C, Springer M, Cossart P. An RNA thermosensor controls expression of virulence genes in Listeria monocytogenes. Cell. September 2002, 110 (5): 551–61 [2011-04-23]. PMID 12230973. doi:10.1016/S0092-8674(02)00905-4. (原始内容存档于2017-11-02).
- ^ Gilbert, Walter. The RNA World. Nature. February 1986, 319 (6055): 618–618. Bibcode:1986Natur.319..618G. doi:10.1038/319618a0.
- ^ Serganov, A; Patel, DJ. Ribozymes, riboswitches and beyond: regulation of gene expression without proteins. Nature Reviews Genetics. Oct 2007, 8 (10): 776–90. PMID 17846637. doi:10.1038/nrg2172.
- ^ Bocobza, SE; Aharoni, A. Switching the light on plant riboswitches. Trends in Plant Science. Oct 2008, 13 (10): 526–33. PMID 18778966. doi:10.1016/j.tplants.2008.07.004.
- ^ Gaubig, LC; Waldminghaus, T; Narberhaus, F. Multiple layers of control govern expression of the Escherichia coli ibpAB heat-shock operon. Microbiology (Reading, England). Jan 2011, 157 (Pt 1): 66–76. PMID 20864473. doi:10.1099/mic.0.043802-0.
- ^ Balsiger, S; Ragaz C; Baron C; Narberhaus F. Replicon-specific regulation of small heat shock genes in Agrobacterium tumefaciens. J Bacteriol. 2004, 186 (20): 6824–6829. PMC 522190 . PMID 15466035. doi:10.1128/JB.186.20.6824-6829.2004.